O meio não deve ser incubado por mais de 24 horas, pois, se os fermentadores de lactose predominarem, todo o meio pode ficar cor-de-rosa, mascarando a presença de fermentadores não lactose. Características coloniais Escherichia coli - Colônias semi-translúcidas de cor-de-rosa brilhante com um halo cor-de-rosa circundante no meio. Proteus mirabilis - Colônias translúcidas azul-verde. Klebsiella aerogenes - Colônias mucoideas cinza-verde. Aeromonas anitratus - Pequenas, cinza-verde, colônias translúcidas. Staphylococcus aureus - Colônias amarelas douradas brilhantes lisas, inteiras e opacas. Fermentação com lactose. Staphylococcus albus - Colônias brancas, de porcelana opaca ou suaves, inteiras ou muito pálidas. Enterococcus faecalis - Similar a Staph. Aureus mas menor e uma cor amarela laranja muito mais profunda. Streptococcus pyogenes - Pequenas colônias opacas de cinza-verde. Furniss et al. 3 descrevem o uso de CLED Medium com Andradersquos Indicator para distinguir rapidamente os vibrios em grupos halofílicos e não halofílicos. Os vibrios não halofílicos crescem vibradores halofílicos não. Condições de armazenamento e tempo de validade Armazene o meio desidratado a 10-30degC e use antes do prazo de validade no rótulo. Armazene as placas preparadas de meio a 2-8degC. Aparência Meio desidratado: Pale verde, pó de fluxo livre Meio preparado: Gel de cor verde azul Proteus mirabilis ATCCreg 12453 Bom crescimento Colônias azuis sem enxames Proteus vulgaris ATCCreg 8427 Bom crescimento Colônias translúcidas de azul verde Staphylococcus aureus ATCCreg 25923 Colonia de laranja amarelo de bom crescimento com rosa Halo Este organismo está disponível como uma precaução de Culti-Loopreg. Observe o limite de tempo de incubação de 24 horas se houver colônias de fermentação da lactose. As espécies de Shigella podem não crescer em meio deficiente em eletrólitos. Referências 1. Mackey J. P. e Sandys G. H. (1966) B. M.J. 1. 1173 2. Bevis T. D. (1968) J. Med. Laboratório. Technol. 25. 38-41. 3. Furniss A. L. Lee J. V. e Donovan T. J. (1978) P. H.L. S. Série de monografias, Londres, H. M.S. O. 11. Ajustado conforme necessário para atender aos padrões de desempenho Direções Suspender 36,2g em 1 litro de água destilada. Traga para ferver para dissolver completamente. Esterilize por autoclave em 121degC por 15 minutos. Misture bem antes de verter. Descrição Um meio desidratado de Deficiência de Cistina-Lactose-Eletrólito (CLED) feito com a fórmula descrita por Mackey e Sandys 1 como uma modificação para a bacteriologia urinária do Meio de Deficiência de Eletrólito desenvolvido por Sandys 2. Este meio é recomendado para a bacteriologia urinária, apoiando o crescimento de todos os agentes patogênicos urinários e dando boas diferenciações coloniais e características diagnósticas claras. A presença de contaminantes importantes, como difípteros. Lactobacilos e micrococos também são claramente induzidos, dando indicação do grau de contaminação. No laboratório, o meio CLED fornece um agar de diagnóstico não inibitório valioso para a cultura de placas de organismos urinários. É eletrolítico deficiente para evitar o enxame de espécies de Proteus. O meio foi utilizado com sucesso na técnica de Meio de Transporte de inoculador Dip (Mackey e Sandys 1,3). Uma variante desta técnica foi descrita por Guttman e Naylor 4 que empregaram slides revestidos de mídia. Essas técnicas superam falsos resultados bacteriológicos associados ao atraso no transporte dos espécimes de urina para o laboratório e permitem uma contagem viável diferencial de rotina clinicamente precisa. Eles são, portanto, adequados tanto para o clínico geral como para o trabalho hospitalar, incluindo a triagem de espécimes pré-natais para bacteriúria assintomática. Para detalhes completos, os documentos originais devem ser consultados. Características de Crescimento no CLED Medium (18 horas de incubação)
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